R&D Préclinique

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En contact direct avec le plateau R&D Radiopharmaceutique de CERIMED permettant un approvisionnement optimal en radiotraceurs, le plateau R&D Préclinique de CERIMED est ouvert à la communauté scientifique et industrielle pour la réalisation de campagnes d’imagerie préclinique dans différents contextes :

Etudes en biologie et physiopathologie

Cancérologie, cardiovasculaire, métabolisme, neurologie...

Développement de médicaments, radiotraceurs,
produits de contraste...
Développements
technologiques

Validation de prototypes

Formation
initiale et continue
en imagerie & chirurgie

pour scientifiques et professionnels de santé. Partenariat possible avec l’industrie

Une solution tout-en-un

  • Hébergement de rongeurs en zone exempte d’organismes pathogènes spécifiques (EOPS) en portoir ou armoire ventilée (capacité : 80 rats, 300 souris)
 
  • Hébergement de cochons (2 boxes de 9m2 et 1 box post-opératoire), primates non humains en ambulatoire.
  • Rongeurs : double plateau de microchirurgie en zone EOPS avec microscopes binoculaires Leica, postes d’anesthésie halogénée iso/sévoflurane, respirateur, tapis chauffant.
  • Gros animaux : bloc de chirurgie et d’autopsie équipé, parc d’anesthésie : 4 respirateurs Drager (1 Zeus, 2 Julian, 1 Cato) + systèmes de monitorage de paramètres vitaux

Bloc de chirurgie      Dräger, Zeus® Infinity® Empowered. Station d'anesthésie associant un éventail complet de thérapie ventilatoire à un monitorage de pointe

De la préparation des animaux pour les acquisitions au traitement des données d’imagerie : toutes les modalités d’imagerie préclinique sont disponibles et cumulables à CERIMED, du rongeur au primate non humain (vide infra).

Nous pouvons vous conseiller dans le choix des modalités en termes de sensibilité et de résolution, en fonction des besoins de votre projet, des espèces et des modèles précliniques étudiés. 

Préparation automatisée des pièces anatomiques prélevées pour réaliser les analyses histologiques : chaine complète d’inclusion en paraffine (Sakura VIP), automate de coloration (Sakura DRS 2000), automate d’immunohistochimie (Leica Bond III).

             

  • Standardisation et automatisation : meilleure reproductibilité, moins de variabilité interindividuelle
  • Gain de temps considérable

Analyses microscopiques photoniques (lumière blanche et fluorescence) des échantillons tissulaires et quantification des marquages d’immunohistochimie : station de microscopie et d’imagerie Nikon Elipse 600NE.

Imagerie in vivo

Rongeurs

L’imagerie TEMP (SPECT) repose sur la détection de photons gamma. La caméra NanoSPECT-CT+ (Mediso) permet l’acquisition et la fusion d’imageries tomographiques SPECT couplées CT. Equipée de collimateurs multi-pinholes, elle permet de réaliser des acquisitions rapides et en corps entier avec une  résolution intermédiaire (0.5 mm) mais une excellente sensibilité (de l’ordre du picomolaire) pour cette modalité.

L’imagerie TEP repose sur la détection en coïncidence de 2 photons émis à 180° par les émetteurs de positons. La caméra NanoScan PET-CT (Mediso) permet l’acquisition et la fusion d’imageries tomographiques CT et TEP avec une bonne résolution spatiale (quelques dizaines de µm) et une excellente sensibilité (jusqu’au femtomolaire) pour cette modalité. 

Le Cyclone Phosphor System (Perkin-Elmer) est utilisé pour déterminer ex vivo la biodistribution d’une substance radioactive au niveau cellulaire ou organique (coupes), le plus souvent en complément d’une imagerie in vivo. L’accès à un compteur gamma est également possible pour compter ex vivo la radioactivité des organes ou tissus prélevés à partir d’animaux euthanasiés.

Indépendamment des acquisitions, CERIMED dispose de 3 performantes consoles de traitement de données d’imagerie µSPECT/CT et µPET/CT pour permettre calculs, interprétation, et analyse statistique.

Pour plus de détails, veuillez nous contacter ci-dessous !

Le Vevo 2100 (Visualsonics) est un appareil d’échographie dédié au petit animal offrant une performance exceptionnelle dans un large éventail d’applications et de modèles animaux. Equipé des sondes et plateaux adaptés aux rats et souris, ainsi que des modules :

  • Imagerie morphologique à haute résolution : 30µm.
  • Doppler couleur : pour la détection de vaisseaux sanguins, y compris des informations d’écoulement directionnel et des vitesses moyennes, ainsi que pour l’identification de petits vaisseaux.
  • 3D : pour la visualisation anatomique et vasculaire, qui permet, lorsqu’il est combiné avec le mode Doppler, la quantification du volume et la vascularisation au sein d’une structure anatomique définie.

Le Gamma-Imager (Biospace) de par son champ de vue important (10cm) et sa haute résolution temporelle, est particulièrement adapté aux acquisitions cinétiques pour des phénomènes superficiels.

Evaluation in vivo de la perfusion sanguine avec le LASER-Doppler (PERIMED)

porcins - primates non humains

Bloc de radiologie interventionnelle équipé d’une table d’opération radiotransparente (Steris), un arceau générateur de rayons X (GE, Fluorostar) et 2 échographes (Toshiba et Hitachi).

La plateforme IRM est équipée d’un SIEMENS Magnetom Prisma (champ statique de 3 Tesla) : 

  • Tunnel de 60 cm 
  • 64 canaux de réception RF
  • Système de gradients de dernière génération (jusqu’à 80mT/m et 200 T/M/s de temps de montée)

                  

 Antennes :

  • Antennes tête de 20 et 64 canaux
  • Antennes rachis, abdomen
  • Antennes “multi-purpose”, boucles

Périphériques de réponse :

  • Claviers ergonomiques et boutons réponses
  • Réponse motrice analogique (capteurs de force, dispositif de mesure d’angle articulaire)
  • Joystick numérique ou analogique
  • Microphone optique à débruitage temps-réel FOMRI-III d’OptoAcoustic
  • Système de mesure d’oculométrie à 1000 Hz EyeLink 1000 de SR-Research
  • Tablette graphique résistive et logiciel adapté pour tâche d’écriture

Périphériques de stimulation :

  • Stimulation visuelle : vidéo-projecteur DLP XGA (1024×768) à 60 Hz
  • Stimulation auditive : Système d’inserts Sensimetrics piézoélectriques
  • Stimulateur tactile électrique isolé
  • Stimulateur tactile par vibrateurs pneumatiques
  • Stimulateur olfactif pneumatique

Recueil de données physiologiques

  • Pléthysmographie SIEMENS couplée à l’IRM
  • Ceinture de respiration SIEMENS couplé à l’IRM
  • ECG SIEMENS couplé à l’IRM

Pour plus de détails, veuillez nous contacter ci-dessous !

SPECT/CT (Optima NM/CT 640, General Electric Medical Systems)

                           

PET/CT (Discovery 710 Elite (128-slice CT), General Electric Medical systems) équipé d’un scanner X de très haute technologie

                           

Pour plus de détails, veuillez nous contacter ci-dessous !

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Le plateau R&D de CERIMED est :

  • agréé par la DRAAF PACA (Ministère de l’Agriculture) : tous les projets comportant de l’expérimentation animale sont autorisés par un Comité d’Ethique indépendant et par le Ministère de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche
  • agréé par l’Autorité de Sûreté Nucléaire pour l’utilisation de radionucléides à des fins de recherche préclinique in vivo
  • labellisé IBiSA
  • membre de France Life Imaging.

Ethique
& Qualité

asn
ibisa
FLI

COLLABORATIONS
& prestations

La contribution de CERIMED à vos projets de R&D peut être réalisée dans le cadre de conventions collaboratives ou de contrats de prestation (nous contacter pour devis). 

Au delà des images, différents modèles précliniques peuvent être proposés à la demande (greffes tumorales, ischémie périphérique, cardiaque et cérébrale adulte ou néonatale… ).

AAA
covidien
Medtronic Logo (blue)
Vecthorus
DHU
C2VN
LIIE
CRCM
CINAM
CPPM
IBDML
LMA
IML
UMRS910
WHRI
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Incubateur d'

Imagerie In vivo de l'angiogenèse :
mise au point d'un radiotraceur TEP

Projets phares - rongeurs

Développement de radiotraceurs innovants à fort potentiel théranostique :

  • Imagerie TEP de l’angiogenèse vasculaire et tumorale : 68Ga-sCD146
  • Imagerie TEP et SPECT de l’effet EPR inflammatoire ou tumoral via des microparticules originales radiomarquées
  • Imagerie TEP de la biodistribution de microvésicules endothéliales radiomarquées dans des modèles rongeurs de pathologies vasculaires

Suivi par imagerie SPECT / TEP de modèles rongeurs de pathologies tumorales

Suivi par écho-Doppler-3D de modèles rongeurs de pathologies cardiaques, cardiovasculaires, et tumorales

conditionnement pour greffe hépatique à partir de donneur vivant

Projets phares - gros animaux

  • Développement d’agents d’embolisation innovants: colles, coils, polymères.
  • Evaluation de l’effet des radiofréquences et des micro-ondes sur le tissu parenchymateux.
  • Elastographie par ondes de cisaillement (shear waves) du placenta chez la babouine gestante.
  • Participation au Work Package 6 du programme européen EndoTofPet-US (Novel multimodal endoscopic probes for simultaneous PET/ultrasound imaging for image-guided interventions).
  • Développement d’un axe virtopsie

CONTACTS

Rongeurs :
modèles et imagerie

Rongeurs :
modèles et imagerie

Gros Animaux :
modèles et imagerie

Gros Animaux :
modèles et imagerie

Modalités IRM

Modalités IRM

Dernières productions scientifiques

Brevets

  • Radiolabeled soluble CD146, preparation and uses thereof (EP17305198)

 

  • Blood flow reducer and method using the same (PCT/EP2015/056018)

Dernières Publications

  1. Top-down activation of the visuo-orthographic system during spoken sentence processing. Neuroimage. 2019;202 :116135. Planton, S, Chanoine, V, Sein, J, Anton, JL, Nazarian, B et al.. PubMed PMID:31470125
  2. A Comprehensive Review of Non-Covalent Radiofluorination Approaches Using Aluminum [18F]fluoride: Will [18F]AlF Replace 68Ga for Metal Chelate Labeling?. Molecules. 2019;24 (16):. Fersing, C, Bouhlel, A, Cantelli, C, Garrigue, P, Lisowski, V et al.. PubMed PMID:31394799
  3. European Association of Nuclear Medicine Practice Guideline/Society of Nuclear Medicine and Molecular Imaging Procedure Standard 2019 for radionuclide imaging of phaeochromocytoma and paraganglioma. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2019;46 (10):2112-2137. Taïeb, D, Hicks, RJ, Hindié, E, Guillet, BA, Avram, A et al.. PubMed PMID:31254038
  4. Determination of optical parameters of the porcine eye and development of a simulated model. J Biophotonics. 2019; :e201800398. Regal, S, O’Connor, D, Brige, P, Delattre, R, Djenizian, T et al.. PubMed PMID:31251453
  5. In Vivo Feasibility of Arterial Embolization with Permanent and Absorbable Suture: The FAIR-Embo Concept. Cardiovasc Intervent Radiol. 2019;42 (8):1175-1182. Vidal, V, Hak, JF, Brige, P, Chopinet, S, Tradi, F et al.. PubMed PMID:31025052
  6. CD146 deficiency promotes plaque formation in a mouse model of atherosclerosis by enhancing RANTES secretion and leukocyte recruitment. J. Mol. Cell. Cardiol. 2019;130 :76-87. Blin, MG, Bachelier, R, Fallague, K, Moussouni, K, Aurrand-Lions, M et al.. PubMed PMID:30928429
  7. Thromboxane-prostaglandin receptor antagonist, terutroban, prevents neurovascular events after subarachnoid haemorrhage: a nanoSPECT study in rats. Crit Care. 2019;23 (1):42. Lagier, D, Tonon, D, Garrigue, P, Guillet, B, Giacomino, L et al.. PubMed PMID:30744667
  8. Handedness in monkeys reflects hemispheric specialization within the central sulcus. An in vivo MRI study in right- and left-handed olive baboons. Cortex. 2019;118 :203-211. Margiotoudi, K, Marie, D, Claidière, N, Coulon, O, Roth, M et al.. PubMed PMID:30738569
  9. The impact of spelling regularity on handwriting production: A coupled fMRI and kinematics study. Cortex. 2019;113 :111-127. Palmis, S, Velay, JL, Fabiani, E, Nazarian, B, Anton, JL et al.. PubMed PMID:30640140
  10. Molecular profile and proangiogenic activity of the adipose-derived stromal vascular fraction used as an autologous innovative medicinal product in patients with systemic sclerosis. Ann. Rheum. Dis. 2019;78 (3):391-398. Magalon, J, Velier, M, Simoncini, S, François, P, Bertrand, B et al.. PubMed PMID:30612118
  11. Early prediction of revascularisation by angiomotin-targeting positron emission tomography. Theranostics. 2018;8 (18):4985-4994. Moyon, A, Garrigue, P, Balasse, L, Fernandez, S, Brige, P et al.. PubMed PMID:30429881
  12. Self-assembling supramolecular dendrimer nanosystem for PET imaging of tumors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2018;115 (45):11454-11459. Garrigue, P, Tang, J, Ding, L, Bouhlel, A, Tintaru, A et al.. PubMed PMID:30348798
  13. Onyx Migration Into the Anterior Spinal Artery During Lumbar Artery Embolisation: an Adverse Event. EJVES Short Rep. 2018;39 :20-23. Gaudry, M, Lagier, D, Brige, P, Frandon, J, Rolland, PH et al.. PubMed PMID:29988815
  14. Stem cell properties of peripheral blood endothelial progenitors are stimulated by soluble CD146 via miR-21: potential use in autologous cell therapy. Sci Rep. 2018;8 (1):9387. Essaadi, A, Nollet, M, Moyon, A, Stalin, J, Simoncini, S et al.. PubMed PMID:29925894
  15. Morbidity and mortality of hepatic right lobe living donors: systematic review and perspectives. J Gastrointestin Liver Dis. 2018;27 (2):169-178. Brige, P, Hery, G, Chopinet, S, Palen, A, Azoulay, D et al.. PubMed PMID:29922762
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